Ova studija pokazuje da je gljivica Kosakonia oryziphila NP19, izolirana iz korijena riže, obećavajući biopesticid koji potiče rast biljaka i biokemijsko sredstvo za suzbijanje plamenjače riže. In vitro eksperimenti provedeni su na svježim listovima aromatičnih sadnica riže Khao Dawk Mali 105 (KDML105). Rezultati su pokazali da NP19 učinkovito inhibira klijanje konidija gljivice uzrokovane plamenjačom riže. Gljivična infekcija inhibirana je pod tri različita uvjeta tretmana: inokulacija riže s NP19 i gljivičnim konidijama; istovremena inokulacija lista s NP19 i gljivičnim konidijama; te inokulacija lista gljivičnim konidijama nakon čega slijedi tretman s NP19 30 sati kasnije. Nadalje, NP19 je smanjio rast gljivičnih hifa za 9,9–53,4%. U eksperimentima u lončanicama, NP19 je povećao aktivnost peroksidaze (POD) i superoksid dismutaze (SOD) za 6,1% do 63,0% odnosno 3,0% do 67,7%, što ukazuje na poboljšane obrambene mehanizme biljaka. U usporedbi s nezaraženim kontrolama NP19, biljke riže zaražene NP19 pokazale su povećanje sadržaja pigmenata za 0,3%–24,7%, broja punih zrna po metlici za 4,1%, prinosa punih zrna za 26,3%, indeksa mase prinosa za 34,4% i sadržaja aromatskog spoja 2-acetil-1-pirolina (2AP) za 10,1%. Kod biljaka riže zaraženih i s NP19 i s muharom, povećanja su iznosila 0,2%–49,2%, 4,6%, 9,1%, 54,4% i 7,5%. Poljski pokusi pokazali su da su biljke riže kolonizirane i/ili inokulirane s NP19 pokazale povećanje broja punih zrna po metlici za 15,1–27,2%, prinosa punog zrna za 103,6–119,8% i sadržaja 2AP za 18,0–35,8%. Ove biljke riže također su pokazale veću aktivnost SOD-a (6,9–29,5%) u usporedbi s biljkama riže zaraženim plamenjačom koje nisu inokulirane s NP19. Folijarna primjena NP19 nakon infekcije usporila je napredovanje lezija. Stoga se pokazalo da je K. oryziphila NP19 potencijalni bioagens koji potiče rast biljaka i biopesticid za kontrolu plamenjače riže.
Međutim, na učinkovitost fungicida utječu mnogi čimbenici, uključujući formulaciju, vrijeme i način primjene, težinu bolesti, učinkovitost sustava za predviđanje bolesti i pojavu sojeva otpornih na fungicide. Nadalje, upotreba kemijskih fungicida može uzrokovati rezidualnu toksičnost u okolišu i predstavljati zdravstveni rizik za korisnike.
U eksperimentu s posudama, sjeme riže je površinski sterilizirano i proklijalo kako je gore opisano. Zatim je posijano s K. oryziphila NP19 i presađeno u posude za sadnice. Sadnice su inkubirane 30 dana kako bi se omogućilo da sadnice riže niknu. Sadnice su zatim presađene u posude. Tijekom procesa presađivanja, biljke riže su gnojene kako bi se pripremile za infekciju gljivicom koja uzrokuje rižinu pegavost i kako bi se testirala njihova otpornost.
U poljskom pokusu, proklijalo sjeme zaraženo s Aspergillus oryzae NP19 tretirano je gore opisanom metodom i podijeljeno u dvije skupine: sjeme zaraženo s Aspergillus oryzae NP19 (RS) i nezaraženo sjeme (SAD). Proklijalo sjeme posađeno je u posude sa steriliziranom zemljom (mješavina zemlje, spaljene rižine ljuske i gnoja u omjeru 7:2:1 po težini) i inkubirano 30 dana.
Suspenzija konidija *Oryziphila* dodana je u R rižu i nakon 30 sati inkubacije, na isto mjesto dodano je 2 μl *K. oryziphila* NP19. Sve Petrijeve zdjelice inkubirane su na 25°C u mraku tijekom 30 sati, a zatim pod kontinuiranim osvjetljenjem. Svaka skupina je replicirana tri puta. Nakon 72 sata inkubacije, biljni presjeci su pregledani i podvrgnuti skenirajućem elektronskom mikroskopu. Ukratko, biljni presjeci su fiksirani u fosfatno puferiranoj otopini soli koja sadrži 2,5% (v/v) glutaraldehida i dehidrirani u nizu otopina etanola. Uzorci su osušeni na kritičnim točkama ugljikovim dioksidom, zatim presvučeni zlatom i promatrani pod skenirajućim elektronskim mikroskopom tijekom 15 minuta.
Vrijeme objave: 13. listopada 2025.